Лекция: Дезинфекционные мероприятия при особо опасных инфекциях. Заключительная дезинфекция в очагах чумы С этой целью необходимо

Г.Р.Юсупова к.в.н., начальник НИС КГАВМ им. Н.Э.Баумана.

Установлено, что реакция непрямой гемаггпютинации с использованием антительного эритроцитарного диагностикума позволяет определить вирусоицидное действие химических веществ из различных классов

Классическая чума свиней (КЧС) - высококонтагиозная инфекционная болезнь, характеризующаяся лихорадшй; поражением кровеносной и кроветворной систем, крупозным воспалением легких и крупозно-дифтерическим воспалением толстого отдела кишечника,

В настоящее время КЧС встречается повсеместно, за исключением США, Канады, Австралии, Исландии, Ирландии, Новой Зеландии, Норвегии, Швеции В результате плановых противоэпизоотических мероприятий \л, в частности, широкого применения живой вакцины, масштабы ее распространения в России резко сократились, Так, по данным В.А. Апалькина (2005) в Российской Федерации КЧС зарегистрирована в 2004 г, в одном пункте, а в 2005г. - в шести, где заболело и уничтожено 1213 голов свиней, Несмотря на ограниченные эпизоотические вспышки, для профилактики заболевания государство тратит колоссальные суммы на вакцинацию свинопоголовья.

В связи с этим, наряду с разработкой новых эффективных вакцин и средств диагностики, актуальным остается изыскание новых, экологически безопасных дезинфектантов.

Вопросам устойчивости вируса КЧС во внешней среде посвящено небольшое количество работ, в которых показано, что его устойчивость зависит от характера материала, в котором содержится вирус (кусочки ткани органов, кровь, моча и др.). температуры, влажности высыхания, процессов гниения По мнению П.И. Притулина, А.И. Карелина (1969) вирус КЧС весьма устойчив к воздействию внешних факторов окружающей среды, особенно низким температурам В замороженном состоянии он сохраняется многие месяцы и даже годы (XT Гизатуллин и сотр., 1973; Г Р Юсупова, 1990). К высушиванию вирус малочувствителен и сохраняет вирулентность от 3 до б лет (Г.Р Юсупова, 1990).

В настоящее время для дезинфекции при КЧС широко используют 1,0-2,5%-ный раствор едкого натра, инактивирующий вирус за 60 минут. Н.А Лагуткин (1983) установил, что химиопрепарат А-24 в концентрации 500 мкг/мл полностью инактивирует 9,0 log ККИ-Д50/мл вакцинного штамма "ЛКВНИИВВиМ" вируса КЧС, что позволяет получать лабораторные образцы концентрированной культуральной инактивированной вакцины против КЧС.

В ветеринарной практике также используют 3%-ный раствор крезола, 5%-ный раствор фенола, 2,5%-ный раствор формальдегида, хлорную известь в разведении 1:5 и 1:20 (П.И. Притулин идр,; 1969) Однако как справедливо отмечают А.З. Равилов и др. (1974), B.C. Угрюмова (1980) проблема изыскания новых эффективных препаратов для ветеринарной дезинфекции остается актуальной. Однако работ, касающихся изыскания новых средств для дезинфекции при классической чуме свиней единичны (В.Х. Павлов, 1989).

Целью наших исследования явилось изыскание новых дезинфектантов, наиболее полно обеззараживающих вирус КЧС во внешней среде.

Материалы и методы. При изучении предполагаемых дезинфицирующих средств испытуемых химических соединений применяли "Методические указания по первичному отбору дезинфицирующих средств при особо опасных инфекциях по изменению антигенной активности возбудителей, выявляемой с помощью серологических реакций" (ута ГУВ ГАПК СМ СССР по продовольствию и закупкам 5 06 1990г) Постановку РИГА осуществляли согласно наставлению, разработанному Р.Х, Юсуповым и Г X. Ильясовой (1989),

Результаты исследований. Первичному испытанию для изучения инактивирующего действия в отношении вируса КЧС подвергнуто 50 препаратов, относящихся к различным классам химических соединений, в их число входили как синтезированные препараты, так и отходы химической и нефтехимической промышленности (табл)

Из представленных в таблице данных видно, что большинство исследованных препаратов обладают инактивирующим действием на вирус КЧС. Так, из числа исследованных препаратов инактивирующими свойствами в отношении вируса чумы свиней обладали синтезированные препараты, полученные из Института органической и физической химии им. А Е Арбузова (№№ 290, 319, 321, 46, 291, 418, 461, 411, 412, Ф-761,

Перечень химических веществ, использованных для первичного испытания инактивирующего действия их на вирус КЧС

Обозначение:

Обладает инактивирующим действием на вирус КЧС; - - не обладает инактивирующим действием на вирус КЧС.

515, 516, 517, 369, 82а) и ряд других препаратов, полученных из ВНИИВСГиЭ (хлорнонизид, ДП-2, дезоксон-2, глутаровый альдегид, сульфохлорантин, гипохлорит кальция технический), и также отходы химической и нефтехимической промышленности (№ 756, ТРФН, феносмолин, сульфатно-форшатный раствор, щелочные воды, образцы №№ 1: 2, 4, упаренные щелока, гипохлорит кальция технический),

Однако, учитывая острый дефицит дезинфицирующих средств при КЧС, а производство синтезированных препаратов находится в стадии разработки, детальному изучению были подвергнуты три препарата - феносмолин, сульфатно-формизтный раствор (СФР) и натриевая сольдихлориэоциануроеой кислоты (ДП-2), которые общедоступны, однако их инактивирующая активность в отношении вируса КЧС не была изучена.

С целью определения достоверности метода первичного отбора по степени снижения или отсутствия антигенной активности, первоначальные опыты были проведены с использованием общепринятого при КЧС дезинфектанта - едкого натра.

Проведенные исследования показали, что под действием растворов едкого натра происходит снижение антигенной активности вируса, выявляемой в РИГА с использованием антительного эритроцитарного диагностикумз При этом отмечалось снижение гемагглютинирующей активности под действием 0,1-0,5%-ного раствора щелочи, а при 3%-ной и 5%-ной концентрациях реакция была отрицательной, то есть происходило полное разрушение антигенности. В соответствующих контролях реакция была положительной - гемагглютинирующая активность составляла 1:8 -1:16. Полученные результаты позволили продолжить отработку РИГА для изучения инактивирующих свойств химических веществ при КЧС

В результате исследований установлено, что феносмолин разрушает тема ггл юти пирующую активность в 0,5%-ной концентрации, снижение антигенности отмечалось уже при применении 0,1% Сульфатно-формиатный раствор более активен в отношении вируса классической чумы свиней - разрушение гемагглютинирующей активности наблюдается в 0,25%; при этом активность вируса резко снижается при применении уже 0,05%, ДП-2 по своему действию на антигенность вируса был аналогичен едкому натру. При использовании в качестве вирусного материала вирусвакцины не были установлены существенные изменения в процессе инактивации (разрушение гемагглютинирующей активности), а именно, концентрации, действующие на гемаггл юти пирующую активность, оставались на том же уровне, и при этом наиболее существенное влияние оказывал сульфатно-формизтный раствор.

Таким образом, проведенные исследования убедительно показали, что реакция непрямой гемагглютинации (РИГА) с использованием антительного эритроцитарного диагностикума позволяет определить вирусоицидное действие изучаемых химических веществ из различных классов. При этом следует отметить, что при первичном отборе (скрининге) в качестве вирусного материала можно использовать вирусвакцину против КЧС,

Литература

1 Апалькин В А Эпизоотическая ситуация по особо опасным и карантинным болезням животных // Матер, Межд симпозиума "научные основы обеспечения животных от экотоксикантов, радионуклидов и возбудителей опасных инфекционных заболеваний".-Казань -2005.-4.1 -С 3-6.

2. Гизатуллин Х.Г, Юсупов Р X. Чума свиней и современные методы ее лабораторной диагностики // Тзткнигшэдат, -Казань 1973,-173с

3. Лагуткин Н.А. Перспективы направленного синтеза и эмпирического поиска антивирусных хишопрепаратов /7 Вопросы ветеринарной вирусологии: Тезисы докладов -Покров -1983 -С.137-139,

4 Методические указания по первичному отбору дезинфицирующих средств при особо опасных инфекциях по изменению антигенной активности возбудителей, выявляемой с помощью серологических реакций: утв. ГУВ СМ СССР по продовольствию и закупкам 5.06.1990г.

5. Павлов В.Х Дисс... кандвет нзук Покров. 1989.-127с.

6. Притулин П.И., Карелин!ЛА Чума свиней, основы профилактики болезней свиней // Россельхозиздэт, Москва 1969. -С.57-70.

7 Равилов А 3., Селиванова А С, Угрюмова В С Изыскание химических соединений, оказывающих инактивирующее действие е отношении вируса ящура // Матер, докладов Всес научной конф., посвящ, 100-летию КГВИ -Казань, 1974. -T.I -С 222-225

8 УгрюмовзВС Изыскание дезинфицирующих средств при ящуре//Актуальные вопросы вет вирусологии -Казань, 1980 С. 16.

9. Юсупова Г.Р Дисс. канд, вет наук. Казань 1991.-115с,

10. Юсупов Р.Х, Ильясова ГХ. Наставление по постановке РИГА с антительным эритроцитарным диагностикумом при классической чуме евшей: утв ГУВ ГАПК СССР 4 07

журнал "Ветеринарный врач" №2 2007

Заключительная дезинфекция в очагах чумы производится дезинфекционными бригадами в составе 2-3 человек: врачадезинфекциониста или помощника эпидемиолога, инструкторадезинфектора и 1- 2 дезинфекторов.

Дезбригада оснащается гидропультом, ведрами, щетками, распылителями для порошков и жидкостей, мешками для транспортировки вещей в камеру, расфасованными дезрастворами и инсектицидами, спецодеждой.

Сначала производится дезинсекция. В жилых помещениях для истребления блох используют хлорофос, трихлофос, пиретрум, которыми обрабатывают щели в полу, плинтусы и стены на высоту до 1 м, мягкую мебель, подстилки для собак и кошек. В квартирах, где содержатся животные, полы нужно мыть ежедневно, добавляя на ведро горячей воды стакан керосина и 200 г мыла или соды. В нежилых помещениях производится глубокое опыление нор инсектицидами. Все указанные меры оказывают высокий инсектицидный эффект. В полевых условиях дезинсекция проводится силами противоэпидемических отрядов.

Перед дезинфекцией необходимо приготовить дезинфицирующие растворы. Таковыми при чуме являются 10% раствор лизола, 5% мыльно-феноловый раствор, 3% раствор хлорамина, 1% активированный раствор хлорамина, сухая хлорная известь и др. Помещение и мебель обрабатывают из гидропульта, а вещи, подлежащие камерной дезинфекции, укладывают в плотные мешки. Дезинфекция посуды осуществляется путем ее кипячения или помещения в дезраствор. Она должна быть закончена в присутствии дезинфектора.

Предохранительные прививки. Установлено, что у лиц, переболевших чумой, развивается невосприимчивость к повторному заболеванию. Однако эта невосприимчивость не является абсолютной. Иммунитет при чуме имеет ограниченную эффективность как по длительности, так и по напряженности, т. е. с течением времени он слабеет.

Способность организма вырабатывать известную устойчивость к повторному заболеванию чумой используется в профилактических и противоэпидемических целях. Иммунизация против чумы производится путем введения в организм человека живых, ослабленных или убитых чумных микробов. Иммунизированный организм приобретает способность уничтожать возбудителей чумы посредством фагоцитоза, который стимулируется появляющимися в крови антителами.

Противочумные профилактические прививки проводятся всем лицам, находящимся в очаге заболеваний чумой или пребывающим на территории природных очагов ее, а также выезжающим в неблагополучные по чуме местности.

В нашей стране готовится чумная живая сухая вакцина из ослабленных чумных штаммов ЕВ или К1, безвредных для человека и обладающих довольно высокими иммунизирующими свойствами. Вакцина хранится в высушенном виде. Можно производить прививки как накожным, так и подкожным методом. Подкожное введение вакцины сопровождается почти во всех случаях местной воспалительной реакцией и общими явлениями в виде повышения температуры 37,5-38° С и выше, иногда появлением тошноты и рвоты. Реакция на прививку достигает максимума через 24-48 ч и исчезает спустя 4-5 сут.

« Карантинные инфекции», Б.А. Мокров

Африканская чума – это высококонтагиозная вирусная болезнь свиней (как домашних, так и диких). Протекает в виде эпизоотопии. Характеризируется африканская чума высокой летальностью. Для человека эта болезнь не несет никакой опасности, кроме значительных экономических потерь.

Африканская чума довольно «молодое» заболевание. Впервые было зафиксировано в 20-м веке, в Южной Америке.

Обработка от африканской чумы цена

Физические лица

Юридические лица

Квартиры

Заказать обработку

Каждая вспышка африканской чумы приводит к подоражанию мяса на 20%.

Африканская чума обладает высокой устойчивостью к физическим и химическим факторам. В результате этого вирус долгое время сохраняется в очаге заражения и мясной продукции, если вовремя не провести дезинфекцию. Источник возбудителя – переболевшие или больные свиньи. Основной резервуар возбудителя – дикие свиньи, клещи рода Ornithodorus. Период с момента заражения до появления первых признаков составляет от 5 до 15 суток.

Основные клинические признаки:

Вопрос о вреде африканской чумы для человека еще изучен не до конца!

Африканская чума: дезинфекция

Для начала необходимо определить эпизоотический очаг, а так же инфицированный объект и первую, вторую угрожаемые зоны. После этого накладывается карантин и проводятся меры по обеззараживанию и дезинфекции объекта. Проводится 3-х кратная дезинфекция помещения специальными химическими растворами, а также дезинсекция и дератизация. При дезинфекции может использоваться раствор фоспара/парасода, формалина или хлорсодержащие препараты. Карантин накладывается на 1 месяц. Нормальное возобновление деятельности предприятия возможно через 1 год после обработки.

Дезинфекционные мероприятия при особо опасных инфекциях

Дезинфицирующие средства широко используются при ликвидации очагов особо опасных заболеваний.

Если природа инфекции не установлена, то обеззараживание прозодят так же, как и против самых стойких (спороносных) микробов- возбудителей заразных болезней (сибирской язвы и др.).

В полевых условиях блиндажи и землянки орошают из гидропультов или автомаксов. Сначала обрабатывают потолок и стены (сверху вниз), затем нары и пол. При инфекциях, обусловленных

нестойкими формами микробов, на 1 м2 земляной или глинобитной поверхности расходуют 1 л 5% раствора лизола (нафтализола) или 10% раствора хлорной извести, для уничтожения стойких форм микробов - по 2 л 10-20% растворов хлорсодержащих препаратов.

Полотнища палаток обеззараживают 3-5% раствором лизола (нафтализола) или 0,5% раствором хлорамина. Отхожие ровики заливают 10-20% хлорноизвестковым молоком или 5% раствором лизола, нафтализола, мыльно-карболового раствора из расчета 1 л на 1 м2. При инфекциях, вызванных стойкими формами микробов (сибирская язва), применяют хлорсодержащие растворы, расход которых повышают до 2 л на 1 ж2. Участки почвы обеззараживают 20% хлорпоизвестковым молоком, или 10%" водной суспензией ДТС ГК, или 10% мыльно-крезоловой смесью по 1 л на 1 м2.

Для дезинфекции можно употреблять и дегазирующие средства; дветретиосновную соль гипохлорита кальция, дихлорамин, хлористый сульфурил и др. Их применяют в виде 10-20% растворов для грубой дезинфекции участков почвы, блиндажей, землянок, отхожих мест, кузовов автомобилей и др.

Для обеззараживания при отрицательных температурах воздуха употребляют незамерзающие растворы: 10% раствор хлорамина в 25-28% растворе аммиака или в 40% растворе этиленгли-коля, 10% раствор дихлорамина в дихлорэтане, 50% раствор хлористого сульфурила по 1 л на 1 м2 при заражении нестойкими микробами и по 2 л на 1 ж2 при заражении спорообразующими микробами.

Все работы по дезинфекции проводятся в противогазе и защитном костюме. Во время работы запрещается снимать противогаз и перчатки, принимать пищу, пить и курить. По окончании дезинфекции персонал должен пройти санитарную обработку.

При холере объекты дезинфекции те же, что и при кишечных инфекциях. Для обеззараживания применяют 5-10% раствор лизола или 1-2% раствор хлорсодержащих препаратов. Экспозиция после дезинфекции удлиняется до 2 часов. Обувь и оружие протирают 5% раствором лизола.

Выгребные уборные, отхожие ровики и места сбора пищевых отходов обрабатывают 20% хлорноизвестковым молоком или 10% мыльно-крезоловой смесью. Расход 500 мл на 1 м2.

В помещении, где находился больной чумой, дезинфекцию проводят 5-10% раствором лизола. Сначала разбрызгивают дезинфицирующий раствор в воздух, а затем орошают все предметы, постель, мебель, пол, стены и потолок. Мочу, мокроту и фекалии заливают на 2 часа хлорноизвестковым молоком или 5% раствором лизола.

При заборе вещей для камерной дезинфекции мешок с вещами помещают во второй мешок, который снаружи орошают дезинфицирующим раствором. После выноса вещей помещение дезинфицируют повторно. В необходимых случаях производят дезинсекцию и дератизацию.

При легочной форме сибирской язвы дезинфекцию выполняют в том же объеме, что и при капельных инфекциях. Для обеззараживания применяют: 6% раствор перекиси водорода, 4% активированный раствор хлорной извести или 2% активированный раствор ДТС ГК, или 20% хлорноизвзстковое молоко. Орошение производят двукратно по 1-2 л на 1 м2 поверхности.

Вещи для камерной дезинфекции выносят с такими же предосторожностями, что и при чуме. Малоценные предметы и вещи сжигают.

Выделения больных (мокроту, кал, рвотные массы) смешивают с сухой хлорной известью 1:2 или ДТС ГК 1:4.

Гробы для людей, умерших от чумы, сибирской язвы, холеры, натуральной оспы, должны быть сделаны без щелей, а на дно их насыпана хлорная известь. Трупы, обернутые в простыни, смоченные 5% раствором хлорамина или лизола, сверху присыпают хлорной известью. Крышки гробов должны быть забиты наглухо.

Дезинфекцию трайспорта, доставившего такие гробы, и всех предметов, которые с ними соприкасались, производят на месте орошением: при чуме и холере 5% раствором лизола, а при оспе и сибирской язве 4% активированным раствором хлорной извести. Лица, производившие погребение, проходят санитарную обработку.

ЧУМА

Чума – острая конвенционная инфекционная болезнь, характеризующаяся тяжелой интоксикацией, высокой лихорадкой, поражением лимфатической системы, тенденцией к септицемии.

Этиология. Возбудитель чумы – Yersinia pestis, согласно совре­менным представлениям, признан как самостоятель­ный вид рода Yersinia. Имеет овоидную форму, размеры 1,0–2,0´0,3–0,7 мкм. Характеризуется полиморфизмом, грамотрицателен, спор не образует, формирует капсулу, продуцирует экзотоксин. По способности сбраживать глицерин (Г), рамнозу (Р) и образовывать нитриты (Н) Y.pestis разделены на варианты: крысиный (Г-Н+); сурчиный (Г+Н+); суслиный (Г+Н-); полевочьий (Г+Н+Р+); песчаночьий (Г+Н- – вызывает постоянную бактери­емию у песчанок). Устойчивость возбудителя чумы позволяет ему переживать в мок­роте и крови в течение нескольких месяцев, в трупах гры­зунов и людей – нескольких дней, в гное бубона – до 20–30 дней. В организме голодающих блох может сохранять жизнеспособность больше года. Микроб не выдерживает конкуренции других микроорганизмов, особенно гнилостных. Температура 50°С вызывает гибель чумной палочки в течение 30–40 мин, 70°С – 10 мин, 100°С – нескольких секунд. К воздействию дезинфицирующих средств (5% раствор фенола, 1–2% раствор хлорамина) малоустойчив.

Источник инфекции. Чума является природно-очаговой инфекцией, приуроченной к определенным географическим зонам, в пределах которых имеются благоприятные условия для расселения основных носителей и переносчиков Y.pestis. В естественных условиях носителями возбудителя чумы являются теплокровные животные, относящиеся более чем к 300 видам. Однако эпизоотическую и эпидемическую значимость в наибольшей мере представляют 5 видов грызунов – сурки, суслики, песчанки, полевки и крысы. На территориях природных очагов среди полевых грызунов с участием специфических кровососущих переносчиков (блох) обеспечивается циркуляция Y.pestis. Увеличение численности животных и переносчиков на отдельных участках приводит к развитию острых эпизоотий чумы. В ходе эпизоотии одна часть популяции грызунов погибает, а вторая – выздоравливает и приобретает устойчивость к возбудителю чумы. Эти обстоятельства приводят к снижению интенсивности эпизоотического процесса. В условиях затухания эпизоотий происходят качественные изменения свойств возбудителя. Снижается вирулентность циркулиру­ющих штаммов, появля­ются атипичные штаммы, увеличивается естественная проиммунизация популяции носителя. Наступает межэпизоотический период, когда чу­мной микроб обнаруживается с трудом или не обнаруживается совре­менными методами вообще. Постепенно давление возбудителя чумы на популяцию носителя ослабевает, так как устойчивые к нему старые особи погибают, а их место занимают новые поколения животных, восприимчивых к чуме. Чувс­твительность к чуме восстанавливается у всей популяции. Эпизоотии среди диких животных приводят к распространению возбудителя чумы на синантропных грызунов и домашних животных (верблюдов).

Инкубационный период составляет от нескольких часов до 6 дней, в среднем – 1–2 дня.

Механизм заражения – трансмиссивный, контактный, аэрозольный.

Пути и факторы передачи. В естественных условиях возбудители чумы распространяются среди грызунов с участием блох. Блохи инфицируются возбудителем чумы при питании на больных грызунах, в крови которых находятся Y.pestis. Вирулентные штаммы чумного микроба попадают в преджелудок блохи, где размножаются и формируют блок, затрудняющий дальнейшее прохождение пищи по желудочно-кишечному тракту насекомого. Такие блохи голодают и при укусе содержимое преджелудка, состоящее из чумных бактерий, попадает в ранку, обеспечивая заражение других грызунов (или человека). Большинство блокированных блох отмирает в течение 2–7 дней, но некоторые особи, будучи за­раженными, выживают до 180–360 дней и сохраняют в желудочно-ки­шечном тракте возбудителя чумы. Различают передачу возбудителей инфекции через блох от грызунов человеку и от человека к человеку. На территории, где протекает эпизоотия среди грызунов, чело­век подвергается угрозе нападения инфицированных блох. Эта опас­ность невелика, когда численность грызунов большая, но в резуль­тате резкого уменьшения последней блохи в поисках пищи нападают на человека, который для них становится случайным хозяи­ном.

Если у больного чумой развивается сепсис, сопровождающийся интенсивной бактериемией, то при наличии человеческих блох в жилище они инфицируются и через 6–10 дней (время, необходимое для образования блока) становятся способными заражать других людей. В этих случаях заболевают почти все члены семьи, у которых преимущественно развиваются бубонно-септические формы чумы.

Охотники могут заражаться чумой контактным путем, сдирая шкурки грызунов, лисиц, зайцев. При этом чаще возникает бубонная форма чумы. Особое место занимают вспышки чумы при контакте с больным верблюдом. В разделке вынужденно убитого верблюда участвует, как правило, несколько че­ловек, и мясо распределяется по нескольким семьям, в которых мо­гут появиться первые больные. Большей частью у лиц, имевших контакт с сырым мясом, развивается бубонная форма чумы.

Несмотря на зоонозную природу чумы, возможно возникновение заболеваний, связанное с передачей возбудителя от челове­ка человеку аэрозольным путем. Эти заболевания наблюдаются при по­явлении у больных вторичной чумной пневмонии, а затем и первичных пневмоний. Такие больные исключительно опасны, так как выделяют ог­ромное количество возбудителей и вспышки развиваются по типу аэрозольных антропонозных инфекций.

Исключительно редко наблюдаются случаи инфицирования людей через выделения изъязвившихся бубо­нов или язв кожи при бубонной и кожной формах чумы. Следует также иметь в виду возможность появ­ления кишечной формы чумы и опасность инфицирования через выделе­ния больного.

Восприимчивость и иммунитет. Восприимчивость человека к возбудителю чумы очень высокая. В прошлом от легочной формы чумы вымирали целые населенные пункты. Перенесенное заболевание оставляет после себя иммунитет невысокой напряженности и недостаточной продолжительности.

Проявления эпидемического процесса. Чума относится к природно-очаговым инфекциям. Природный очаг – энзоотичная по чуме территория, имеющая географические и экологические преграды для носителей, переносчиков и внутривидовых категорий возбудителя чумы. В ее пределах саморегуляция эпизоотического процесса может обеспечиваться в одной или нескольких популяциях основного носителя.

Природные очаги чумы выявлены на всех континентах, кроме Австралии и Антарктиды. Наиболее изучены: Забайкальский, Тувинский, Горно-Алтайский, Тянь-Шаньский и Памиро-Алтайский, Гиссаро-Дарвазский, Среднеазиатский равнинный, Волго-Уральский, Зауральский, Северо-Западного Прикаспия, Центрально-Кавказский, Восточно-Кавказский природные очаги.

Ежегодно в мире регистрируется несколько сотен случаев чумы человека. Заболевания преимущественно выявляются в Африке, Южной Америке и Юго-Восточной Азии. В странах тропического пояса в поддержании чумы важное значение имеют синантропные крысы, формирующие антропургические очаги этой инфекции. В среднеазиатских странах выявляются заболевания чумой, связанные с разделкой туш больного верблюда. В некоторых странах зарегистрированы заносные случаи чумы, обусловленные лицами, прибывшими из эндемичных территорий в инкубационном периоде.

Факторы риска. Нахождение на территории природного очага, недостаточность гигиенических знаний и навыков.

Профилактика. Системой профилактических мероприятий в природных очагах чу­мы предусматриваются: 1) эпидемиологическая разведка и наблюдение; 2) вакцинация населения по показаниям; 3) борьба с грызунами; 4) борьба с блохами диких и синантропных грызунов; 5) мероприятия по предупреждению заноса чумы из зарубежных стран; 6) санитарно-просветительная работа.

Главной целью эпидемиологичес­кой разведки является быстрая оценка эпидемического состояния в очаге на основе эпизоотического обследования энзоотичной по чуме территории и медицинского наблюдения за населением. Эта работа выполняется системой противочумных учреждений. Ведутся поиски локальных и разлитых эпизоотий, определяется плотность грызунов – основных носителей чумы, численность переносчиков, проводятся бактериологическое, биологическое и серологическое исследования полевого материала.

Прививки против чумы в настоящее время целесообразно проводить преимущественно в природных очагах среди лиц, подверженных опасности заражения (пастухи, чабаны, геологи). Массовая вакцинация осуществляется только по показаниям в случае возникновения острых эпизоотий в окрестностях населенных пунктов и угрозы возникновения вторичных очагов чумы среди си­нантропных грызунов. Применение вакцинации для предохранения от спорадических заболеваний чумы в природных очагах как мера профилактики малоэффективна и в настоящее время не рекомендуется.

Одним из наиболее мощных средств профи­лактики чумы в природных очагах является борьба с дикими грызунами – носителями возбудителя болезни. В настоящее время эта мера надежно и быстро подавляет эпизоотии и снижает опасность заражения человека.

Борьба с блохами – высокоэффективное профилактическое мероприятие. Полевая дезинсекция в природных очагах чумы, расположенных в зоне умеренного климата, основанная на принципе глубокой обработки нор инсектицидами, приво­дит к резкому сокращению численности блох и подавлению острых эпизоотий чумы. Несмотря на трудоемкость, такой путь борьбы с чу­мой рассматривается как достаточно перспективный.

Мероприятия по охране территории и предупреждению заноса чу­мы из природных очагов и стран, эндемичных по чуме, проводятся сетью карантинных учреждений, отделами особо опасных инфекций, лечебно-профилактическими и амбулаторно-поликлиническими учреждениями. Основу этих мероприятий составляют: 1) разработка и утверждение планов по предупреждению заноса и распространения чумы на определенной территории; 2) подготовка медицинского персонала по разделам клиники, лечения, лабораторной диагностики чумы и обеспечение его готовности к проведению профилактических и противоэпидемических мероприятий; 3) рациональное распределение функций среди медицинских учреждений; 4) слежение за эпидемической ситуацией в мире и определение потенциальной опасности заноса чумы в страну; 5) контроль на санитарно-контрольных пунктах за своевременным выявлением среди пассажиров, прибывающих в страну, больных с подозрением на чуму; 6) изоляция на 6 дней лиц, в отношении которых возникает подозрение на заражение чумой; 7) создание запасов диагностических, лечебных и профилактических средств.

Санитарное просвещение является важной частью любой програм­мы борьбы с чумой.

Противоэпидемические мероприятия – таблица 33.

Таблица 33

Противоэпидемические мероприятия в очагах чумы